データ分析、機械学習、LLMアプリ、プロンプト設計（8,782 件）
概要と使いどころ
Load and preprocess imaging mass cytometry (IMC) and MIBI data. Covers MCD/TIFF handling, hot pixel removal, and image normalization. Use when starting IMC analysis from raw MCD files or preparing images for segmentation.
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Detect antimicrobial resistance genes using AMRFinderPlus, ResFinder, and CARD. Screen isolates and metagenomes for resistance determinants. Use when characterizing resistance profiles in clinical isolates, surveillance samples, or metagenomic data.
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Cell type assignment from marker expression in IMC data. Covers manual gating, clustering, and automated classification approaches. Use when assigning cell types to segmented IMC cells based on protein marker expression or when phenotyping cells in multiplexed imaging data.
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Polish assemblies and call variants from Oxford Nanopore data using medaka. Uses neural networks trained on specific basecaller versions. Use when improving ONT-only assemblies or calling variants from Nanopore data without short-read polishing.
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Visualize copy number profiles, segments, and compare across samples. Create publication-quality plots of CNV data from CNVkit, GATK, or other callers. Use when creating genome-wide CNV plots, sample heatmaps, or chromosome-level visualizations.
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CRISPResso2 for analyzing CRISPR gene editing outcomes. Quantifies indels, HDR efficiency, and generates comprehensive editing reports. Use when analyzing amplicon sequencing data from CRISPR editing experiments to assess editing efficiency.
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Call copy number variants using GATK best practices workflow. Supports both somatic (tumor-normal) and germline CNV detection from WGS or WES data. Use when following GATK best practices or integrating CNV calling with other GATK variant pipelines.
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Statistical methods for calling hits in CRISPR screens. Covers MAGeCK, BAGEL2, drugZ, and custom approaches for identifying essential and resistance genes. Use when identifying significant genes from screen count data after QC passes.
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Load, convert, and manipulate Hi-C contact matrices using cooler format. Read .cool/.mcool files, convert from .hic format, access matrix data, and export to different formats. Use when loading or converting Hi-C contact matrices.
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Detect copy number variants from targeted/exome sequencing using CNVkit. Supports tumor-normal pairs, tumor-only, and germline CNV calling. Use when detecting CNVs from WES or targeted panel sequencing data.
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Perform differential expression analysis using DESeq2 in R/Bioconductor. Use for analyzing RNA-seq count data, creating DESeqDataSet objects, running the DESeq workflow, and extracting results with log fold change shrinkage. Use when performing DE analysis with DESeq2.
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Bead-based normalization for CyTOF and high-parameter flow cytometry. Covers EQ bead normalization, signal drift correction, and batch normalization. Use when correcting instrument drift in CyTOF or harmonizing data across batches.
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Remove batch effects from RNA-seq data using ComBat, ComBat-Seq, limma removeBatchEffect, and SVA for unknown batch variables. Use when correcting batch effects in expression data.
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Detect A/B compartments from Hi-C data using cooltools and eigenvector decomposition. Identify active (A) and inactive (B) chromatin compartments from contact matrices. Use when identifying A/B compartments from Hi-C data.
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Detect and remove doublets from flow and mass cytometry data. Covers FSC/SSC gating and computational doublet detection methods. Use when filtering out cell aggregates before clustering or quantitative analysis.
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Analyze time-series RNA-seq data using limma voom with splines, maSigPro, and ImpulseDE2. Identify genes with dynamic expression patterns. Use when analyzing time-series or longitudinal expression data.
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Read and manipulate Flow Cytometry Standard (FCS) files. Covers loading data, accessing parameters, and basic data exploration. Use when loading and inspecting flow or mass cytometry data before preprocessing.
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Convert between sequence file formats (FASTA, FASTQ, GenBank, EMBL) using Biopython Bio.SeqIO. Use when changing file formats or preparing data for different tools.
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Manual and automated gating for defining cell populations in flow cytometry. Covers rectangular, polygon, and data-driven gates. Use when identifying cell populations through hierarchical gating strategies.
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Spillover compensation and data transformation for flow cytometry. Covers compensation matrix calculation, application, and biexponential/arcsinh transforms. Use when correcting spectral overlap between fluorophores or transforming data for analysis.
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Infer pathogen transmission networks and identify likely transmission pairs using TransPhylo and outbreak reconstruction algorithms. Estimate who-infected-whom from genomic and epidemiological data. Use when investigating outbreak transmission chains or identifying superspreaders.
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Process Hi-C read pairs using pairtools. Parse alignments, filter duplicates, classify pairs, and generate contact statistics from Hi-C sequencing data. Use when processing raw Hi-C read pairs.
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Unsupervised clustering and cell type identification for flow/mass cytometry. Covers FlowSOM, Phenograph, and CATALYST workflows. Use when discovering cell populations in high-dimensional cytometry data without predefined gates.
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Comprehensive quality control for flow cytometry and CyTOF data. Covers flow rate stability, signal drift, margin events, dead cell exclusion, and batch QC. Use when assessing acquisition quality or identifying problematic samples before analysis.
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